前言
第一部分 实验室基本知识
一、实验室规则
二、实验室基本操作
三、实验记录与实验报告
四、实验误差与数据处理
五、植物样品的采取、处理与保存
六、缓冲溶液
第二部分 实验
第一章 糖
实验一 植物组织中糖含量的测定
实验二 还原糖含量的测定（3，5一二硝基水杨酸比色法）
实验三 糖的定量测定（蒽酮法）
第二章 氨基酸和蛋白质
实验四 氨基酸的纸层析
实验五 脯氨酸含量的测定
实验六 蛋白质及氨基酸的呈色反应
实验七 蛋白质的沉淀反应
实验八 蛋白质的两性反应和等电点的测定
实验九 蛋白质含量的测定
Ⅰ 双缩脲法测定蛋白质含量
Ⅱ 考马斯亮蓝染色法测定蛋白质含量
Ⅲ 紫外分光光度法测定蛋白质含量
Ⅳ Folin一酚试剂法（Lowry法）测定蛋白质含量
实验十 细胞色素C的制备和测定
实验十一 SDS一聚丙烯酰胺凝胶电泳法（SDS—PAGE）测定蛋白质相对分子质量
实验十二 凝胶层析法测定蛋白质相对分子质量
第三章 酶和维生素
实验十三 酶的特异性
实验十四 温度、pH值对淀粉酶活性的影响
Ⅰ 温度对淀粉酶活性的影响
Ⅱ pH值对淀粉酶活性的影响
实验十五 过氧化氢酶活性的测定
实验十六 过氧化物酶活性的测定
实验十七 聚丙烯酰胺凝胶圆盘电泳测定过氧化物同工酶
实验十八 植物组织中硝酸还原酶活性的测定
实验十九 淀粉酶活性的测定
实验二十 酶浓度对酶促反应速度的影响——碱性磷酸酶活性的测定
实验二十一 底物浓度对酶促反应速度的影响——米氏常数的测定
实验二十二 溶菌酶的提取和系列性质测定
Ⅰ 溶菌酶的提取
Ⅱ 蛋白质浓度、酶活力测定一
Ⅲ 酶促动力学（Km，测定、脲的抑制）
Ⅳ 酶的最适pH值
Ⅴ 酶的最适温度
Ⅵ 分子筛层析测酶相对分子质量
Ⅶ SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳测定酶相对分子质量及其纯度鉴定
实验二十三 维生素c含量的测定
第四章 核酸
实验二十四 DNA的制备
Ⅰ DNA的制备及其含量测定（浓盐分离法）
Ⅱ 植物组织中核酸的提取及定量测定
实验二十五 DNA的含量测定
Ⅰ 紫外吸收法测定DNA含量
Ⅱ 定磷法测定DNA含量
Ⅲ 二苯胺显色法测定DNA含量
实验二十六 离子交换柱层析分离核苷酸
第三部分 附录
一、离心技术
二、分光光度计说明与原理
三、常用蛋白质相对分子质量（Mt）标准参照物
四、常用缓冲溶液的配制方法
五、实验室中常用酸碱的密度和浓度
六、硫酸铵饱和度的常用表
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