面向21世纪课程教材：动物生理学实验

　　第一部分 总论
　　第1章 绪论
　　1.1 动物生理学实验及其方法
　　1.1.1 离体实验方法
　　1.1.2 在体实验
　　1.2 动物生理学实验课的教学内容和目的
　　1.3 动物生理学实验课的要求
　　1.3.1 实验前
　　1.3.2 实验时
　　1.3.3 实验后
　　1.4 动物生理学实验报告的撰写
　　第2章 动物生理学实验常用仪器、设备
　　2.1 刺激系统
　　2.1.1 电子刺激器
　　2.1.2 刺激隔离器
　　2.1.3 电极
　　2.2 引导、换能系统
　　2.2.1 机械引导（传动）装置
　　2.2.2 换能器
　　2.3 信号调节放大系统——生物电放大器
　　2.3.1 生物放大器的基本要素
　　2.3.2 微电极放大器
　　2.4 显示、记录系统
　　2.4.1 二道生理记录仪
　　※2.4.2 SBR-1型二线示波器
　　2.5 计算机生物信号采集处理系统在生理学实验中的应用
　　2.5.1 计算机生物信号采集处理系统的基本组成和工作原理
　　2.5.2 计算机生物信号采集处理系统的基本操作
　　2.5.3 刺激器的设置
　　2.5.4 换能器定标
　　第3章 动物生理学实验的基本操作技术
　　3.1 动物生理学实验常用手术器械
　　3.1.1 常用手术器械
　　3.1.2 手术器械的消毒方法
　　3.2 实验动物、实验用动物及其选择
　　3.2.1 实验动物的种类和特性
　　3.2.2 实验动物的选择
　　3.3 实验动物的编号、捉拿、固定方法
　　3.3.1 动物编号方法
　　3.3.2 动物捉拿和固定方法
　　3.4 实验动物的给药方法
　　3.4.1 经口投药法
　　3.4.2 注射给药
　　3.5 动物的麻醉
　　3.5.1 麻醉前的准备工作
　　3.5.2 全身麻醉
　　3.5.3 局部麻醉
　　3.5.4 麻醉效果的观察
　　3.5.5 麻醉注意事项
　　3.6 实验动物的采（取）血与处死方法
　　3.6.1 实验动物的采（取）血方法
　　3.6.2 实验动物的处死方法
　　3.7 组织分离和插管术
　　3.7.1 除去被毛
　　3.7.2 切口和止血
　　3.7.3 肌肉、神经、血管的分离
　　3.7.4 插管术
　　3.8 动物实验意外事故的处理
　　3.8.1 麻醉过量和窒息
　　3.8.2 大出血
　　第4章 动物生理学研究性实验的程序与基本要求
　　4.1 动物生理学实验设计
　　4.1.1 立题
　　4.1.2 实验设计
　　4.2 筛选与预备性实验
　　4.2.1 初步筛选
　　4.2.2 预备实验
　　4.3 实验结果的观察、记录及其处理
　　4.3.1 实验及其结果的观察和记录
　　4.3.2 实验结果的处理
　　4.3.3 研究（实验）的结论
　　4.4 生理学实验研究论文的撰写
　　第二部分 各论
　　第5章 细胞的基本功能
　　实验5.1 坐骨神经-腓肠肌标本制备
　　实验5.2 刺激强度对肌肉收缩的影响
　　实验5.3 刺激频率对肌肉收缩的影响
　　实验5.4 心肌收缩的特点
　　实验5.5 神经干复合动作电位及其传导速度的测定
　　实验5.6 神经兴奋不应期的测定
　　实验5.7 强度-时间曲线的测定
　　实验5.8 蛙坐骨神经-腓肠肌标本中神经、肌肉兴奋时的电活动和肌肉收缩的综合观察
　　实验5.9 影响神经动作电位传导速度的因素（实验设计）
　　第6章 血液生理
　　实验6.1 红细胞比容的测定
　　实验6.2 血红蛋白的测定
　　实验6.3 红细胞沉降率的测定
　　实验6.4 红细胞脆性的测定
　　实验6.5 血细胞计数
　　实验6.6 出血时间的测定
　　实验6.7 凝血时间的测定
　　实验6.8 影响血液凝固的因素
　　实验6.9 AB0血型鉴定和交叉配血实验
　　实验6.10 实验设计
　　第7章 血液循环生理
　　实验7.1 蛙心起搏点观察
　　实验7.2 鱼类心脏的期前收缩与代偿间歇
　　实验7.3 心脏灌流
　　实验7.4 心音听诊
　　实验7.5 微循环观察
　　实验7.6 交感神经对血管和瞳孔的作用
　　实验7.7 蛙心电图和容积导体的导电规律
　　实验7.8 禽与哺乳动物的心电图描记
　　实验7.9 鱼类心电图的描记
　　实验7.10 心血管活动的神经体液调节
　　实验7.11 家兔的心电图和左心室内压的同步观察
　　实验7.12 影响心输出量的因素（实验设计）
　　第8章 呼吸生理
　　实验8.1 大鼠离体肺静态顺应性的测定
　　实验8.2 呼吸运动的调节
　　实验8.3 膈肌电活动的记录
　　实验8.4 呼吸运动、胸内负压及膈神经放电的同步观察
　　实验8.5 鱼类呼吸运动及重金属离子对鱼类洗涤频率的影响
　　第9章 消化生理
　　实验9.1 离体小肠平滑肌的生理特性
　　实验9.2 唾液分泌的观察
　　实验9.3 唾液、胰液和胆汁的分泌
　　实验9.4 胃内容物的分层分布
　　实验9.5 在体小肠运动的记录
　　实验9.6 胃肠运动的直接观察
　　实验9.7 家禽的食管切开术与假饲实验
　　实验9.8 大白鼠胃液分泌的调节
　　实验9.9 反刍动物咀嚼与瘤胃运动的描记
　　实验9.10 瘤胃内容物在显微镜下的观察
　　实验9.11 反刍的机制
　　实验9.12 小肠的吸收
　　实验9.13外源性胆囊收缩素（CCK）对动物摄食行为的调控（实验设计）
　　第10章 能量代谢与体温调节生理
　　实验10.1 小白鼠能量代谢的测定
　　实验10.2 温度对鱼类耗氧量的影响
　　实验10.3 动物体温的测定
　　实验10.4 甲状腺素对代谢的影响
　　第11章 泌尿与渗透压调节
　　实验11.1 影响尿生成的因素
　　实验11.2 肾小球血流的观察
　　实验11.3 鱼类渗透压调节
　　实验11.4 循环、呼吸、泌尿综合实验
　　第12章 神经与感觉生理
　　实验12.1 脊髓反射的基本特征和反射弧的分析
　　实验12.2 大脑皮层运动机能定位和去大脑僵直
　　实验12.3 去小脑动物的观察
　　实验12.4 肌梭传人冲动的观察
　　实验12.5 破坏动物一侧迷路的效应
　　第13章 生殖、内分泌生理
　　实验13.1 甲状腺对蝌蚪变态的影响
　　……
　　附录1 常用生理溶液、试剂、药物的配制与使用
　　附录2 实验动物的生理指标
　　附录3 实验参数配置表
　　参考文献

　　    《动物生理学实验》以鱼类、两栖类、鸟（禽）类、哺乳类等11种脊椎动物为实验对象；以实验基本操作技术为基础；以现代电子技术，特别是计算机生物信号采集处理技术为主要手段；注重对学生能力、综合素质的培养。书中合理保留和删节了一些经典的生理学实验，增加了综合性实验和设计性实验，加强了实验教学体系的理论教学内容。《动物生理学实验》由浅入深，循序渐进，初步形成了独立的动物生理学实验教学体系。《动物生理学实验》共分两大部分13章，第一部分总论主要介绍动物生理学实验课的教学目的、内容及要求，常用仪器设备、手术器械工作原理及操作，动物生理实验基本操作技术，动物生理学研究的基本程序与要求。第二部分各论从细胞、血液、血液循环、呼吸、消化、能量代谢与体温、泌尿与渗透压调节、神经与感觉、内分泌与生殖9个器官系统遴选出76个实验，各专业可根据需要进行选择。《动物生理学实验》主要面向高等农林、水产院校的动物生产类、动物医学、野生动物资源保护等专业的本、专科学生，也可作为综合性大学、师范院校生物科学专业的本、专科生教学用书和相关科学工作者的参考书。